Моделирование гипоксии печени в эксперименте in vivo

   Проведено исследование влияния редукции кровотока портальной триады на уровень ферментов печени, ее состояние и выживаемость лабораторных мышей. Уровни аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы в обеих группах с редукцией кровотока были статистически значимо выше, чем в контрольной, а также статистически значимо выше в группе с забором крови через 24 ч после реперфузии по сравнению с группой с забором крови через 2 ч после реперфузии. Гистологическое исследование показало признаки ишемического повреждения тканей, также наблюдалось увеличение количества сосудов в препаратах печени животных с редукцией кровотока по сравнению с контролем. Уровень выживаемости животных после выполнения процедуры составил более 80 %, что является удовлетворительным, но, тем не менее, указывает на необходимость такого количества животных, которое позволит выполнить статистическую обработку результатов даже в случае гибели некоторых особей. Результаты исследования показали, что полученная модель является важным инструментом для исследований в области изучения патологических состояний печени, связанных с ишемическими и гипоксическими условиями.

1. Кит О.И., Гончарова А.С., Лукбанова Е.А. Методы создания ортотопических моделей рака толстой кишки человека на иммунодефицитных животных // Вопросы онкологии. 2019. Т. 65. №. 2. С. 303-307. DOI: 10.37469/0507-3758-2019-65-2-303-307

2. Межевова И.В., Ситковская А.О., Кит О.И. Первичные культуры опухолевых клеток: современные методы получения и поддержания in vitro. Южно-Российский онкологический журнал // South Russian Journal of Cancer. 2020;1(3): 36- 49. DOI: 10.37748/2687-0533-2020-1-3-4

3. Bonnitcha P., Grieve S., Figtree G. Clinical imaging of hypoxia: current status and future directions // Free Radical Biology and Medicine. – 2018. – Vol. 126. – P. 296-312. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2018.08.019

4. Halfway between 2D and animal models: are 3D cultures the ideal tool to study cancer-microenvironment interactions? / Hoarau-Véchot J., Rafii A., Touboul C., [et al] // International journal of molecular sciences. – 2018. – Vol. 19. – №. 1. – P. 181. DOI: 10.3390/ijms19010181

5. How to modulate tumor hypoxia for preclinical in vivo imaging research / De Bruycker S., Vangestel C., Staelens S., [et al] // Contrast Media & Molecular Imaging. – 2018. – Vol. 2018. DOI: 10.1155/2018/4608186

6. Hypoxia, oxidative stress, and inflammation: three faces of neurodegenerative diseases / Merelli A., Repetto M., Lazarowski A., [et al] // Journal of Alzheimer's Disease. – 2021. – Vol. 82. – №. s1. – P. S109-S126. DOI: 10.3233/JAD-201074

7. Kindrick J.D., Mole D. R. Hypoxic regulation of gene transcription and chromatin: Cause and effect // International Journal of Molecular Sciences. – 2020. – Vol. 21. – №. 21. – P. 8320. DOI: 10.3390/ijms21218320

8. Luo W., Wang Y. Hypoxia mediates tumor malignancy and therapy resistance // Hypoxia and Cancer Metastasis. – 2019. – P. 1-18. DOI: 10.1007/978-3-030-12734-3_1

9. Mesarwi O.A., Loomba R., Malhotra A. Obstructive sleep apnea, hypoxia, and nonalcoholic fatty liver disease // American journal of respiratory and critical care medicine. 2019. Vol. 199. №. 7. P. 830-841. DOI: 10.1164/rccm.201806-1109TR

10. Oxygen homeostasis and cardiovascular disease: A role for HIF? / Li X., Zhang Q., Nasser M. I., [et al] // Biomedicine & Pharmacotherapy. – 2020. – Vol. 128. – P. 110338. DOI: 10.1016/j.biopha.2020.110338

11. Use of a hanging-weight system for liver ischemia in mice / Zimmerman M., Tak E., Kaplan M., [et al] // JoVE (Journal of Visualized Experiments). – 2012. – №. 66. – P. e2550. DOI: 10.3791/2550