Профилирование транскриптома единичных циркулирующих иммунных клеток при раке простаты
Э. Р. Акрамова,
Ю. В. Шарифьянова,
Д. Х. Гайнуллина,
П. Н. Шмелькова,
В. Ю. Коробейников,
В. Н. Павлов,
К. И. Еникеева https://doi.org/10.25789/YMJ.2026.93.02
Аннотация
Проведено исследование транскриптомного профиля циркулирующих иммунных клеток (ЦИК) у пациентов с раком простаты методом single-cell RNA-секвенирования. У пациентов с раком простаты в кластере моноцитов были обнаружены высокоэкспрессированные гены: IRAK3, PLXDC2, NAMPT, CYBB, SLC8A1, отвечающие за активацию противоопухолевого иммунитета, воспаление и окислительный стресс, при этом у здоровых добровольцев наблюдалась экспрессия генов FCN1, MNDA, LST1, AIF1, отвечающих за активацию воспаления [1], модуляцию и регуляцию апоптоза [2, 3], рост сосудистых гладкомышечных клеток и Т-лимфоцитов [4]. Анализ транскриптома ЦИК периферической крови пациентов с раком предстательной железы выявил высокоэкспрессированные гены IRAK3, PLXDC2, NAMPT, CYBB, SLC8A1, которые играют важную роль в прогрессировании опухоли и уклонении от иммунного ответа. Эти гены могут служить целевыми мишенями для терапии и обладать диагностическим потенциалом.
При поддержке: Работа выполнена при поддержке Программы стратегического академического лидерства Приоритет 2030 Башкирского государственного медицинского университета.
Об авторах
Э. Р. Акрамова
Институт урологии и клинической онкологии ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Акрамова Элина Ринатовна ‒ мл. науч. сотр. лаборатории иммунологии,
ул. Шафиева, 2, корп. 5, г. Уфа, 450083
Ю. В. Шарифьянова
Институт урологии и клинической онкологии ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Шарифьянова Юлия Вакилевна ‒ мл. науч. сотр. лаборатории иммунологии,
ул. Шафиева, 2, корп. 5, г. Уфа, 450083
Д. Х. Гайнуллина
Институт урологии и клинической онкологии ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Гайнуллина Диана Халиловна ‒ лаборантисследователь лаборатории иммунологии, студент 5 курса педиатрического факультета,
ул. Шафиева, 2, корп. 5, г. Уфа, 450083
П. Н. Шмелькова
Институт урологии и клинической онкологии ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Шмелькова Полина Николаевна ‒ лаборант-исследователь лаборатории иммунологии, студент 5 курса педиатрического факультета,
ул. Шафиева, 2, корп. 5, г. Уфа, 450083
В. Ю. Коробейников
Институт урологии и клинической онкологии ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Коробейников Вячеслав Юрьевич ‒ мл. науч. сотр. лаборатории иммунологии,
ул. Шафиева, 2, корп. 5, г. Уфа, 450083
В. Н. Павлов
Институт урологии и клинической онкологии ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Павлов Валентин Николаевич ‒ акад. РАН, д-р мед. наук, проф., ректор,
ул. Шафиева, 2, корп. 5, г. Уфа, 450083
К. И. Еникеева
Институт урологии и клинической онкологии ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России
Россия
Россия
Еникеева Кадрия Ильдаровна ‒ канд. фарм. наук, зав. лабораторией иммунологии,
ул. Шафиева, 2, корп. 5, г. Уфа, 450083
Список литературы
1. Munthe-Fog L., Hummelshoj T., Honoré C., et al. Variation in FCN1 affects biosynthesis of ficolin-1 and is associated with outcome of systemic inflammation. Genes Immun. 2012; 13 (7): 515-522. doi:10.1038/gene.2012.27
2. Bottardi S., Layne T., Ramòn A.C., et al. MNDA, a PYHIN factor involved in transcriptional regulation and apoptosis control in leukocytes. Front Immunol. 2024; 15:1395035. doi:10.3389/fimmu.2024.1395035
3. Weidle U.H., Rohwedder I., Birzele F., et al. LST1: A multifunctional gene encoded in the MHC class III region. Immunobiology. 2018; 223 (11): 699-708. doi:10.1016/j.imbio.2018.07.018
4. Zhang L., Zhang S., Yao J. et al. Microenvironment-induced PTEN loss by exosomal microRNA primes brain metastasis outgrowth. Nature. 2015; 527 (7576): 100-104. doi:10.1038/nature15376
5. Gandaglia G., Leni R., Bray F., et al. Epidemiology and Prevention of Prostate Cancer. Eur Urol Oncol. 2021; 4 (6): 877-892. doi: 10.1016/j.euo.2021.09.006.
6. Garofano K., Rashid K., Smith M. et al. Prostate cancer cell-platelet bidirectional signaling promotes calcium mobilization, invasion and apoptotic resistance via distinct receptor-ligand pairs. Sci Rep. 2023; 13 (1):2864. doi: 10.1038/s41598-023-29450-x.
7. Descotes JL. Diagnosis of prostate cancer. Asian J Urol. 2019; 6 (2): 129-136. doi: 10.1016/j.ajur.2018.11.007.
8. Dhanasekaran R. Deciphering Tumor Heterogeneity in Hepatocellular Carcinoma (HCC)-Multi-Omic and Singulomic Approaches. Semin Liver Dis. 2021; 41 (1): 9-18. doi: 10.1055/s0040-1722261.
9. Enikeeva K., V. Korobeynikov, Y. Sharifyanova, et. al. Single-Cell Profiling of Mononuclear Cells Identifies Transcriptomics Signatures Differentiating Prostate Cancer From Benign Prostatic Hyperplasia. Genes, chromosomes & cancer. 2025; 64 (5): e70051. DOI:10.1002/gcc.70051
10. Olsen T.K., Baryawno N. Introduction to Single-Cell RNA Sequencing. Curr Protoc Mol Biol. 2018; 122 (1). doi: 10.1002/cpmb.57.
11. Novel Long Noncoding RNA HEAT4 Affects Monocyte Subtypes, Reducing Inflammation and Promoting Vascular Healing. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE267646 (дата обращения: 01.09.2024).
12. Sun B.L., Sun X., Casanova N. et al. Role of secreted extracellular nicotinamide phosphoribosyltransferase (eNAMPT) in prostate cancer progression: Novel biomarker and therapeutic target. EBioMedicine. 2020; 61: 103059. doi: 10.1016/j.ebiom.2020.103059.
13. Xiang H., Ramil C.P., Hai J., et al. Cancer-Associated Fibroblasts Promote Immunosuppression by Inducing ROS-Generating Monocytic MDSCs in Lung Squamous Cell Carcinoma. Cancer Immunol Res. 2020; 8 (4): 436-450. doi: 10.1158/2326-6066.CIR-19-0507.
14. Wight Thomas N, Kang Inkyung, Evanko Stephen P, et al. Versican-A Critical Extracellular Matrix Regulator of Immunity and Inflammation. Front Immunol. 2020; 11. doi: 10.3389/fimmu.2020.00512 PMID: 32265939
15. Nielsen M.C., Andersen M.N., Møller H.J. Monocyte isolation techniques significantly impact the phenotype of both isolated monocytes and derived macrophages in vitro. Immunology. 2020; 159 (1): 63-74. doi:10.1111/imm.13125
16. Chen X., Li Y., Xia H., et al. Monocytes in Tumorigenesis and Tumor Immunotherapy. Cells. 2023; 12 (13):1673. doi:10.3390/cells12131673
17. Pereira M., Gazzinelli R.T. Regulation of innate immune signaling by IRAK proteins. Front Immunol. 2023; 14:1133354. doi: 10.3389/fimmu.2023.1133354.
18. Mannaerts C.K., Wildeboer R.R., Remmers S., et al. Multiparametric Ultrasound for Prostate Cancer Detection and Localization: Correlation of B-mode, Shear Wave Elastography and Contrast Enhanced Ultrasound with Radical Prostatectomy Specimens. J Urol. 2019; 202 (6): 1166-1173. doi: 10.1097/JU.0000000000000415.
19. Zhang C., Ma H.M., Wu S., et al. Secreted PTEN binds PLXDC2 on macrophages to drive antitumor immunity and tumor suppression. Dev Cell. 2024; 59 (23): 3072-3088.e8. doi: 10.1016/j.devcel.2024.08.003.
20. Heske C.M. Beyond Energy Metabolism: Exploiting the Additional Roles of NAMPT for Cancer Therapy. Front Oncol. 2020; 9 (1514). doi:10.3389/fonc.2019.01514
21. Huang T., Feng X., Wang J., et al. Calcium-Related Genes Predicting Outcomes and Serving as Therapeutic Targets in Endometrial Cancer. Cells. 2022; 11 (19:3156). doi: 10.3390/cells11193156.
22. Li X., Fan Y., Tang M., et al. PLXDC1 Can Be a Biomarker for Poor Prognosis and Immune Evasion in Gastric Cancer. J Inflamm Res. 2022; 15: 5439-5455.
23. Lai X., Lu S., Jiang J., et al. Association of polymorphisms of calcium reabsorption genes SLC12A1, KCNJ1 and SLC8A1 with colorectal adenoma. J Cancer Res Clin Oncol. 2023; 149 (11): 8335-8344.
24. Litwin T.R., Irvin S.R., Chornock R.L., et al. Infiltrating T-cell markers in cervical carcinogenesis: a systematic review and meta-analysis. Br. J. Cancer. 2021; 124: 831-41.
25. Jayshree R. S. The Immune Microenvironment in Human Papilloma Virus-Induced Cervical Lesions-Evidence for Estrogen as an Immunomodulator. Front Cell Infect Microbiol. 2021; 11: 649815. doi:10.3389/fcimb.2021.649815
26. Yang X., Yin F., Liu Q., et al. Ferroptosis-related genes identify tumor immune microenvironment characterization for the prediction of prognosis in cervical cancer. Ann Transl Med. 2022; 10 (2):123. doi: 10.21037/atm-21-6265.
Рецензия
Для цитирования:
Акрамова Э.Р., Шарифьянова Ю.В., Гайнуллина Д.Х., Шмелькова П.Н., Коробейников В.Ю., Павлов В.Н., Еникеева К.И. Профилирование транскриптома единичных циркулирующих иммунных клеток при раке простаты. Якутский медицинский журнал. 2026;(1):10-15. https://doi.org/10.25789/YMJ.2026.93.02
For citation:
Akramova E.R., Sharifyanova Yu.V., Gainullina D.Kh., Shmelkova P.N., Korobeinikov V.Yu., Pavlov V.N., Enikeeva K.I. Transcriptome profiling of circulating immune cells in prostate cancer at single-cell resolution. Yakut Medical Journal. 2026;(1):10-15. (In Russ.) https://doi.org/10.25789/YMJ.2026.93.02
Просмотров:
65
JATS XML
Послать статью по эл. почте 