Метаболические показатели при холодовой экспозиции
https://doi.org/10.25789/YMJ.2018.62.08
Аннотация
Проведено исследование на работниках ГОК, которые по своим профессиональным обязанностям находились при низких температурах воздуха от 2 до 9 ч. Выявлены достоверные корреляционные связи, доказывающие влияние холода на массу тела, индекс массы тела, объем талии и бедер. При анализе экспрессии генов показаны достоверные корреляционные связи генов-маркеров браунинга с длительностью нахождения на холоде.
Об авторах
А. В. Ефремова
ЯНЦ КМП; Университет Политекник дель Марке
Россия
Россия
ЕФРЕМОВА Аграфена Владимировна – к.б.н., с.н.с.; Phd студент
М. И. Томский
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
ТОМСКИЙ Михаил Иннокентьевич – д.б.н., проф.
С. Чинти
Ун-т Политекник дель Марке; Центр по изучению ожирения
Италия
Италия
ЧИНТИ Саверио – MD, проф.; директор
Е. А. Исаков
ЯНЦ КМП; РБ №1-национального центра медицины МЗ РС(Я)
Россия
Россия
ИСАКОВ Евгений Андреевич – м.н.с., врач патологоанатом
В. А. Алексеев
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
АЛЕКСЕЕВ Владислав Амирович – м.н.с.
А. А. Григорьева
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
ГРИГОРЬЕВА Анастасия Анатольевна – м.н.с.
Л. И. Константинова
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
КОНСТАНТИНОВА Лена Ивановна – н.с.
Е. Д. Охлопкова
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
ОХЛОПКОВА Елена Дмитриевна – к.б.н., вед.н.с.-руковод. лаб.
А. И. Яковлева
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
ЯКОВЛЕВА Александра Ивановна – м.н.с.
Л. Д. Олесова
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
ОЛЕСОВА Любовь Дыгыновна – к.б.н., вед.н.с.-руковод. лаб.
Е. И. Семенова
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
СЕМЕНОВА Евгения Ивановна – к.б.н., с.н.с.
З. Н. Кривошапкина
ЯНЦ КМП
Россия
Россия
КРИВОШАПКИНА Зоя Николаевна – к.б.н., с.н.с.
Список литературы
1. Barbatelli G., Murano I, Madsen L. The emergency of cold-induced brown adipocytes in mouse white fat depots is determined predominantly by white to brown adypocyte transdifferation // Am J Physiol Endocrinol Metab 298: E1244 – E1253, 2010.
2. Bonet ML., Oliver P, Palou A. Pharmacological and nutritional agents promoting browning of white adipose tissue // Biochim Biophys Acta 1831: 965 – 985, 2013.
3. Cannon, B., Nedergaard, J. Brown adipose tissue: function and phisiological significance // Physiol. Rev. 84. 277 – 359., 2004.
4. Cinti S. The adipose organ. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 73: 9 – 15, 2005.
5. Cinti S., Cancello R., Zingaretti MC., [et al.]. CL 316,243 and cold stress induce heterogeneous expression og UCP1 mRNA and protein in rodent brown adipocytes // J Histochem 50: 21 – 31, 2002.
6. Frontini A., Cinti S. Distribution and development of brown adipocytes in the murine and human adipose organ // Cell Metab. 11, 253 – 256, 2010.
7. Fuster A., Oliver P., Sanchez J. [et al.]. UCP1 and oxidative capacity of adipose tissue in adult ferrets (Mustela putorius furo). Comp Biochem physiol A Mol Integr Physiol 153: 106 – 112, 2009.
8. Kopesky J., Hodny Z., Rossmeisl M. [et al.]. Reduction of dietary obesity in aP2-Ucp transgenic mice: physiology and adipose tissue distribution // Am J Physiol Endocrinol Metab 270: E768 –E7752, 1996.
9. Lasar D., Julius A., Fromme T., Klingenspor M. Browning attenuates murine white adipose tissue expansion during postnatal development // Biochim. Biophys Acta 1831: 960–968, 2013.
10. Lee YH., Petkova AV, Mottillo EP., Granneman JG. In vivo identification of bipotential adipocyte progenitors recruited by β3- adrenoreceptor activation and high-fat feeding // Cell Metab 15: 480 – 491, 2012.
11. Liew CC., Ma J., Tang HC. [et al.]. The peripheral blood transcriptom dynamically reflects system wide biology: a potential diagnostic tool // J Lab Clin Med 147: 126 – 132, 2006.
12. Nedergaard J., Bengtsson T., Cannon B. Unexpected evidance for active brown adipose tissue in adult humans // American Journal of Physiology, Endocrinology and Metabolism 2007. 293 E444-E452.
13. Ouellet V., Routhier-Labadie A., Bellemare W. [et al.]. Outdoor temperature, age, sex, body mass index, and diabetic status determine the prevalence, mass, and glucose-uptake activity of 18F-FDG-detected BAT in humans // Journal of Clinical Endocrinology&Metabolism. 2011. 96. - P.192–199.
14. Orava J. et al. Blunted metabolic responses to cold and insulin stimulation in brown adipose tissue of obese humans. Obesity (Silver spring) 21, 2279 – 2287, 2013.
15. Palou A., Pico C., Bonet M.L., Oliver P. The uncoupling protein, thermogenin // J Biochem Cell Biol 30: 7 – 11, 1998.
16. Rodriguez A.M., Palo A. Uncoupling proteins: gender dependence and their relation to body weight control. Int J Obes Relat Metab Disord 28: 500 – 502, 2004.
17. Saito M., Okamatsu-Ogura Y., Matsushita M. [et al.]. Hight incidence of metabolically active brown adipose tissue in healthy adult humans: effects of cold exposure and adiposity // Diabetes 58, 1526 – 1531 (2009).
18. Seal P., Conroe HM., Estall J. [et al.]. Prdm 16 determines the termogenic program of subcutaneous white adipose tissue in mice // J.Clin. Invest.121, 96 – 105, 2011.
19. Walden TB., Hansen IR., Timmons JA. [et al.] Recruited vs J. nonrecruited molecular signatures of brown, ‘brite’, and white adipose tissues // Am J Physiol Endocrinol Metab 302: E 19 – E31, 2012.
20. Wu J., Coulter A., Rim JS. Microparticles: protagonists of a novel communication network for intercellular information exchange // Circ. Res. 107, 1047– 1057, 2005
21. Wu J. [et al.]. Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and human // Cell 150, 366 – 376, 2012.
22. Wu Y [et al.]. Identification of miR-106b-93 as a negative regulator of brown adipocyte differentiation // Biochem. Biophys. Res. Commun. 438, 575 – 580, 2013.
23. Wu L. [et al.]. Profiling peripheral microRNAs in obesity and type type 2 diabetes mellitus. APMIS 123, 580 – 585, 2015.
24. WHO. Obesity: preventing and managing the global epidemic. Report on a WHO Consultation. Technical report series, № 894/ WHO. – Geneva, 2000. – 265 p.
25. Xue B., Coulter A., Rim J.S. [et al.]. Transcriptional synergy and the regulation of UCP1 during brown adipocyte induction in white fat depots // Mol Cell Biol 25: 8311-8322, 2005.
Рецензия
Для цитирования:
Ефремова А.В., Томский М.И., Чинти С., Исаков Е.А., Алексеев В.А., Григорьева А.А., Константинова Л.И., Охлопкова Е.Д., Яковлева А.И., Олесова Л.Д., Семенова Е.И., Кривошапкина З.Н. Метаболические показатели при холодовой экспозиции. Якутский медицинский журнал. 2018;(2):25-27. https://doi.org/10.25789/YMJ.2018.62.08
For citation:
Efremova A.V., Tomsky M.I., Cinti S., Isakov E.A., Alekseev V.A., Grigorieva A.A., Konstantinova L.I., Okhlopkova E.D., Yakovleva A.I., Olesova L.D., Semenova E.I., Krivoshapkina Z.N. Metabolic indices in cold exposure. Yakut Medical Journal. 2018;(2):25-27. https://doi.org/10.25789/YMJ.2018.62.08
Просмотров:
4
Послать статью по эл. почте 