Определение биохимических маркеров измененного метаболизма печени у белых крыс, подвергшихся воздействию рентгеновских лучей

В статье представлены сведения о проведенном исследовании по изучению изменений уровня ферментов и свободных продуктов перекисного окисления липидов при нарушении метаболизма в печени экспериментальных животных, подвергшихся рентгеновскому облучению. Исследование проведено на 42 интактных белых крысах, которые были разделены на три группы. В первую группу (контрольную) вошли 6 белых крыс. Во вторую группу вошли 18 интактных белых крыс, подвергшихся рентгеновскому облучению. В третьей группе через 10 суток после прекращения рентгеновского облучения (18 животных) измеряли уровень печеночных ферментов в крови. В крови (сыворотке) подопытных животных определяли уровни перекисноe окислениe липидов (ПОЛ), малонового диальдегида (МДА), диеновых конъюгатов (ДК), перекиси водорода (H₂O₂), креатинфосфокиназы (КФК), щелочной фосфатазы (ЩФ), лактатдегидрогеназы (ЛДГ), гамма-глутамилтрансферазы (ГГТ), аспартатаминотрансферазы (АСТ) и аланинаминотрансферазы (АЛТ).

1. Венидиктова Д.Ю., Борсуков А.В. К вопросу об использовании двухэнергетической рентгеновской абсорбциометрии у пациентов с метаболическим синдромом и ассоциированной с ним жировой болезнью печени. Медицинский алфавит. 2023;(11):25-30. https://doi.org/10.33667/2078-5631-2023-11-25-30.

2. Никитинская О.А., Торопцова Н.В. Определение содержания жира в составе тела методом биоэлектрического импеданса и двуэнергетической рентгеновской абсорбциометрии // Медицинский алфавит. 2021; № 16: 3034. DOI: 10.33667/2078-5631-2021-16-30-34.

3. Павлова О.Н., Тулаева О.Н., Гуленко О.Н., Лукенюк Е.В. Исследование изменений активности ферментов системы глутатиона в крови и печени при экспериментально индуцированной дислипопротеинемии на фоне механического повреждения скелетной мышцы у крыс разных возрастных групп. Вестник медицинского института «РЕАВИЗ». Реабилитация, Врач и Здоровье. 2023;13(2):23–30. https://doi.org/10.20340/vmi-rvz.2023.2.PHYS.

4. Шеремета М.С., Трухин А.А., Корчагина М.О. Применение радиоактивных веществ в медицине — история и перспективы развития // Проблемы эндокринологии. 2021; 67(6): 5967. doi: https://doi.org/10.14341/probl12824.

5. Aguilar Diaz De Leon J., Borges C.R. Evaluation of Oxidative Stress in Biological Samples Using the Thiobarbituric Acid Reactive Substances Assay, Journal of Visualized Experiments, 2020 May 12;(159):61122. DOI: 10.3791/61122.

6. Dong SQ, Yang F, Zhang DX, et al. Effect of X-ray radiation on the pharmacokinetics of apatinib in vivo in rats. Front. Pharmacol. 2022;13:943812. doi: 10.3389/fphar.2022.943812.

7. Ksas B., Havaux M. Determination of ROS-Induced Lipid Peroxidation by HPLC-Based Quantification of Hydroxy Polyunsaturated Fatty Acids. Methods Mol Biol. 2022;2526:181-189. doi: 10.1007/978-1-0716-2469-2_13.

8. Moula A, Borgi MA, Ellafi A, et al. Biosorption of heavy metals from phosphate-processing effluent by Serratia rubidaea NCTC12971 immobilized in Ca-alginate beads. Int Microbiol. 2023 Jan;26(1):149-160. doi: 10.1007/s10123-02200284-3.

9. Pannala VR, Hari A, AbdulHameed MDM, et al. Quantifying liver-toxic responses from dose-dependent chemical exposures using a rat genome-scale metabolic model. Toxicol Sci. 2025 Apr 1;204(2):154-168. doi: 10.1093/toxsci/kfaf005.

10. Raya-Povedano JL, Romero-Martín S, Elías-Cabot E, et al. AI-based Strategies to Reduce Workload in Breast Cancer Screening with Mammography and Tomosynthesis: A Retrospective Evaluation. Radiology. 2021 Jul;300(1):5765. doi: 10.1148/radiol.2021203555.

11. Romanko M., Orobchenko O, Ushkalov V, et al. Evaluation of biochemical markers in the blood plasma of rats exposed to chronic administration of a mixture of metal nanoparticles. Veterinarska Stanica, 2023;54(1):69-85. https://doi.org/10.46419/vs.54.1.10.