Изучение влияния различных способов криоконсервации на жизнеспособность ксенотрансплантатов опухолей желудочнокишечного тракта человека с использованием моделей in vivo

Проведена оценка эффективности 3 протоколов криосохранения опухолевой ткани, полученной от пациентов со злокачественными образованиями желудочно-кишечного тракта: пищевода, желудка, толстого кишечника. Эксперимент выполняли на 90 мышах линии Balb/c Nude. Через 90 сут от момента заморозки опухолевых узлов образцы размораживали и имплантировали животным, отмечали количество прижившихся имплантатов и регистрировали начало роста опухолевых узлов у животных. Для криосохранения ксенографтов рака пищевода и толстой кишки человека возможно использование протестированных нами протоколов 2 и 3, где ключевой особенностью является медленное замораживание образцов. Для опухолевого материала желудка необходимо разрабатывать иные способы консервации ввиду низкой эффективности рассмотренных в работе способов.

1. Использование электронного архива результатов прижизненных патологоанатомических исследований, как инструмент внутреннего контроля качества кодирования по системе МКБ-О-3 (ICD-O), на примере анализа злокачественных новообразований желудка / О.И. Кит [и др.] // Южно-Российский онкологический журнал. 2021. Т.2, №1. С.26–34.

2. Faltus M., Bilavcik A., Zamecnik J. Vitrification ability of combined and single cryoprotective agents. Plants (Basel). 2021; 6;10(11):2392. DOI: 10.3390/plants10112392

3. Goncharova A.S., Egorov G.Y., Kit S.O., et al. Colon cancer modeling by orthotopic xenotransplantation. MPSE. 2021;3:9–9.

4. Intan P.R., Khariri K. The use of laboratory animals in supporting the development of the medical world. SINASIS. 2020;1(1).

5. Lee S., Ryu K.J., Kim B., et al. Comparison between slow freezing and vitrification for human ovarian tissue cryopreservation and xenotransplantation. Int J Mol Sci. 2019 8;20(13):E3346. DOI: 10.3390/ijms20133346

6. Munroe S., Martens D.E., Sipkema D., et al. Comparison of cryopreservation techniques for cells of the marine sponge dysidea etheria. Cryo Letters. 2018;39(4):269–78.

7. Porter L.H., Lawrence M.G., Wang H., et al. Prostate. 2019;79(11):1326–37. DOI: 10.1002/pros.23839

8. Whaley D., Damyar K., Witek R.P., et.al. Cryopreservation: an overview of principles and cell-specific considerations. Cell Transplant. 2021;24;30:0963689721999617. DOI: 10.1177/0963689721999617

9. Yan H.H.N., Siu H.C., Law S., et al. A comprehensive human gastric cancer organoid biobank captures tumor subtype heterogeneity and enables therapeutic screening. Cell Stem Cell. 2018;6;23(6):882-897.e11. DOI: 10.1016/j.stem.2018.09.016

10. Yang J., Gao L., Liu M., et al. Advanced biotechnology for cell cryopreservation. Trans Tianjin Univ. 2020 Dec 1;26(6):409–23.