Межклеточные взаимодействия и уровень агрегации клеток крови в области воспаления у людей, проживающих на Европейском Севере России

Проанализированы иммунологические результаты больных с бронхитом и колитом, а также у практически здоровых лиц в возрасте от 21 до 55 лет с целью изучения межклеточных взаимодействий и относительной доли агрегации нейтрофилов в области воспаления у людей, проживающих на Севере. На фоне нейтропении в области воспаления менее выражен уровень миграции моноцитов и лимфоцитов. В условиях приближенных к физиологическим в экссудате «кожного окна» существенных различий в уровне миграции лейкоцитов не выявлено. При нейтропении в периферической венозной крови выше содержание агрегатов нейтрофилов в области воспаления. Агрегация нейтрофилов приводит к значительно более активной экзосекреции, дегрануляции и лизису клеток агрегата, что может быть одним из механизмов формирования нейтропении у людей, проживающих на Севере.

1. Бельченко Д.И., Кривошеина Е.Л. Соотношение интенсивности экзоцитарного лизиса эритроцитов в ауторозетках периферической крови и характера течения острого лимфобластного лейкоза // Гематология и трансфузиология. 1999. № 3. С. 13-15.

2. Добродеева Л.К., Самодова А.В., Карякина О.Е. Взаимосвязь уровней содержания мозгового натрийуретического пептида в крови и активности иммунных реакций у людей // Физиология человека. 2016. Т. 42, № 6. С. 106- 115. DOI: 10.7868/S0131164616050052.

3. Изменение показателей окислительного стресса и апоптоза нейтрофилов при диффузной и лимитированной формах системной склеродермии / М.В. Ильин [и др.] // Цитокины и воспаление. 2011. Т. 10, № 3. С. 79-81.

4. Ким Л.Б. Транспорт кислорода при адаптации человека к условиям Арктики и кардиореспираторной патологии. Новосибирск: Наука, 2015. 216 с.

5. Клиническая лабораторная диагностика: методы исследования / И.А. Зупанец, С.В. Мисюрева, В.В. Прописнова [и др.]. Харьков: Золотые страницы, 2005. 200 с.

6. Пальцев М.А., Иванов А.А. Межклеточные взаимодействия. М.: Медицина, 1995. 224 с.

7. Пашинская К.О., Самодова А.В., Добродеева Л.К. Влияние содержания апоА-1 в периферической крови на состояние иммунного гомеостаза у лиц, проживающих в экстремальных условиях Арктики // Клиническая лабораторная диагностика. 2021. Т. 66, № 9. С. 539-545. DOI: 10.51620/0869-2084-2021-66-9-539-545.

8. Петрищева Н.Н., Папаян Л.П. Гемостаз. Физиологические механизмы, принципы диагностики основных форм геморрагических заболеваний. СПб., 1999. 153 с.

9. Письменная С.В. Исследование содержимого кишечника: учебно-методическое пособие. Архангельск: ГАОУ СПО АО «АМК», 2013. 61 с.

10. Подберезин М.М. Современные методы диагностики аутоиммунных гемолитических анемий // Гематология и трансфузиология. 1998. № 1. С. 15-18.

11. Ройтберг Г.Е., Струтынский А.В. Внутренние болезни. Лабораторная и инструментальная диагностика: учеб. пособие. М., 2013. 800 с.

12. Самодова А.В., Цыпышева О.Б. Соотношение внеклеточного пула рецепторов и уровня иммунных реакций у людей, проживающих в условиях Заполярья // Экология человека. 2015. № 12. С. 21–27.

13. Смирнова Е.А., Бельченко Д.И., Кривошеина Е.Л. Использование определения частоты экзоцитарного лизиса эритроцитов в костномозговых эритроклазических кластерах для прогнозирования характера и выбора терапии идиопатической тромбоцитопенической пурпуры у детей // Педиатрия. 1997. Т. 76, № 4. С. 63-65.

14. Старикова Э.А., Киселева Е.П., Фрейдлин И.С. Гетерогенность мононуклеарных фагоцитов: субпопуляции или проявления пластичности // Успехи современной биологии. 2005. Т. 125, № 5. С. 466-477.

15. Циркулирующие иммунные комплексы в диагностике аллергической реакции иммунокомплексного типа / Т.Н. Лебедева [и др.] // Клиническая лабораторная диагностика. 2004. № 11. С. 11-13.

16. Чернух А.М. Воспаление. М.: Медицина, 1979. 448 с.

17. Bessis M.C. Erythroblastic island, functional unity of bone marrow / M.C. Bessis // Rev Hematol. 1958. V. 13. P. 8-11.

18. Clark R.A. Chemotactic factors trigger their own oxidative inactivation by human neutrophils / R.A. Clark // J Immunol.1982. V. 129. P. 2725-2731.

19. Clark R.A. Two cytostatic components of the human neutrophil respiratory burst oxidase translocate to the plasma membrane during cell activation / R.A. Clark, B.D. Volpp, K.G. Leiddal, W.M. Nauseef // J Clin Invest. 1990. V. 85(3). P. 714-721. DOI: 10.1172/JCI114496.

20. Complement (C5a)-induced granulocyte aggregation in vitro. A possible mechanism of complement-mediated leukostasis and leukopenia / P.R. Graddock, D.E. Hammerschmidt, J.G. White [et al.] // J Clin Invest. 1977. V. 60(1). P. 260-264. DOI: 10.1172/JCI108763.

21. Consensus repeat domains of E-selectin enhance ligand binding / S.H. Li, D.K. Burns, J.M. Rumberfer [et al.] / J Biol Chem. 1994. V. 269(6). P. 4431-4437. DOI: 10.1016/s0021-9258(17)41798-4.

22. Dobrodeeva L.K. Intercellular interactions in peripheral venous blood in practically healthy residents of high latitudes / L.K. Dobrodeeva, A.V. Samodova, S.N. Balashova, K.O. Pashinskaya // BioMed Research International. 2021. V. 2021. Article ID 7086108. DOI: 10.1155/2021/7086108.

23. Expressing cloning of a receptor for C5a anaphyloxin on differentiated HL-60 cells / F. Boulay, L. Mery, M. Tardif [et al.] // Biochemistry. 1991. V. 30. P. 2993-2999. DOI: 10.1021/bi00226a002.

24. Ford W.L. The Traffic of Lymphocytes / W.L. Ford, J.L. Gowans // Semin Hematol. 1969. V. 6(1). P. 67-83.

25. Hammerschmidt D.E. Corticosteroids inhibit complement-induced granulocyte aggregation. A possible mechanism for their efficacy in chock states / D.E. Hammerschmidt, J.G. White J.G., P.R. Craddock, H.S. Jacob // J Clin Invest. 1979. V. 63(4). P. 798-803. DOI: 10.1172/JCI109365.

26. Hemodialysis leukopenia. Pulmonary vascular leukostasis resulting from complement activation by dialyzer cellophane membranes / P.R. Graddock, J. Fehr, A.P. Dalmasso [et al.] // J Clin Invest. 1977. V. 59(5). P. 879-888. DOI:10.1172/JCI108710.

27. Jandl J.H. The destruction of red cells by antibodies in man. II. Pyrogenic, leukocytic and dermal responses to immune hemolysis / J.H. Jandl, A.S. Tomlinson // J Clin Invest. 1958. V. 37(8). P. 1202-1228. DOI: 10.1172/JCI103710.

28. Korkmaz B. Neutrophil elastase, proteinase 3 and cathepsin G: physicochemical properties, activity and physiopathological functions / B. Korkmaz, T. Moreau, F. Gauthier // Biochimie. 2008. V. 90(2). P. 227-242. DOI: 10.1016/j.biochi.2007.10.009.

29. Lactoferrin is an allosteric enhancer of the proteolytic activity of cathepsin G / S. Eipper, R. Steiner, A. Lesner [et al.] // PLoS One. 2016. V. 11(3). Article ID e0151509. DOI: 10.1371/journal.pone.0151509.

30. Macrophage migration inhibitory factor sustains macrophage proinflammatory function by inhibiting p53: Regulatory role in the innate response / R.A. Mitchell, L. Hong, J. Chesney [et al.] // Proc Natl Acad Sci USA. 2002. V. 99(1). P. 345-350. DOI: 10.1073/pnas.012511599.

31. Neutrophils from burn patients are unable to increase the expression of CD11b/ CD18 in response to inflammatory stimuli / D.A. Rodeberg, R.C. Bass, J.W. Alexander [et al.] // J Leucot Biol. 1997. V. 61(5).P. 572-582. DOI: 10.1002/jlb.61.5.575.

32. Pham C.T.N. Neutrophil serine proteases: specific regulators of inflammation / C.T.N. Pham // Nat Rev Immunol. 2006. V. 6(7). P. 541-550. DOI: 10.1038/nri1841.

33. Rebuck J.W. A method of studying leukocytic functions in vivo / J.W. Rebuck, J.H. Crowley // Ann N Y Acad Sci. 1955. V. 59(5). P. 757-805. DOI: 10.1111/j.1749-6632.1955.tb45983.x.

34. Reciprocal coupling of coagulation and innate immunity via neutrophil serine proteases / S. Massberg, L. Grahl, M-L. von Bruehl [et al.] / Nat Med. 2010. V. 16(18). Р. 887-896. DOI: 10.1038/nm.2184.

35. Springer T.A. Traffic signals for lymphocytes recirculation and leukocyte emigration: the multistep paradigm / T.A. Springer // Cell. 1994. V. 76(2). P. 301-314. DOI: 10.1016/0092-8674(94)90337-9.

36. Theofilopoulus A.N. Immune complexes in human diseases: a review / A.N. Theofilopoulus, F.J. Dixon // Am J Phathol. 1980. V. 100(2). P. 529-594.