ymjЯкутский медицинский журналYakut Medical Journal1813-19052312-1017ЯНЦ КМП10.25789/YMJ.2023.81.06ymj-106Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯORIGINAL RESEARCHИзучение влияния различных способов криоконсервации на жизнеспособность ксенотрансплантатов опухолей желудочнокишечного тракта человека с использованием моделей in vivoStudy of the effects of various cryopreservation methods on viability of human gastrointestinal tumor xenografts in in vivo modelsРомановаМ. В.RomanovaM. V.

Романова Мария Вадимовна – м.н.с.

г. Ростов-на-Дону

Romanova Maria Vadimovna – junior researcher

Rostov-on-Don

m.v.mindar@gmail.comГончароваА. С.GoncharovaA. S.

Гончарова Анна Сергеевна – к.б.н., зав. испытательным лабораторным центром

г. Ростов-на-Дону

Goncharova Anna Sergeevna – PhD in Biology, Head of Experimental Laboratory Center

Rostov-on-Don

fateeva_a_s@list.ruГалинаА. В.GalinaA. V.

Галина Анастасия Владимировна – м.н.с.

г. Ростов-на-Дону

Galina Anastasia Vladimirovna – junior researcher

Rostov-on-Don

volkovaav58@mail.ruКурбановаЛ. З.KurbanovaL. Z.

Курбанова Луиза Зулкаидовна – м.н.с.

г. Ростов-на-Дону

Kurbanova Luiza Zulkaidovna – junior researcher

Rostov-on-Don

luizacurbanowa@mail.ruАллилуеваЕ. В.AlliluevaE. V.

Аллилуева Екатерина Владиславовна – м.н.с.

г. Ростов-на-Дону

Allilueva Ekaterina Vladislavovna – junior researcher

Rostov-on-Don

katherine_bio@mail.ruХодаковаД. В.KhodakovaD. V.

Ходакова Дарья Владиславовна – м.н.с.

г. Ростов-на-Дону

Khodakova Daria Vladislavovna – junior researcher

Rostov-on-Don

coctail.moxuto@yandex.ruГусареваМ. А.GusarevaM. A.

Гусарева Марина Александровна – к.м.н., зав. отделением радиотерапии №1

г. Ростов-на-Дону

Gusareva Marina Aleksandrovna – PhD, Head of Department of Radiotherapy №1

Rostov-on-Don

onko-sekretar@mail.ruЗиньковичМ. С.ZinkovichM. S.

Зинькович Михаил Сергеевич – к.м.н., врач-радиотерапевт

г. Ростов-на-Дону

Zinkovich Mikhail Sergeevich – PhD, radiotherapist, Department of Radiotherapy №1

Rostov-on-Don

onko-sekretar@mail.ruФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Минздрава РоссииРоссияNational Medical Research Centre for OncologyRussian Federation202304022025012528Copyright © Романова М.В., Гончарова А.С., Галина А.В., Курбанова Л.З., Аллилуева Е.В., Ходакова Д.В., Гусарева М.А., Зинькович М.С., 20252025Романова М.В., Гончарова А.С., Галина А.В., Курбанова Л.З., Аллилуева Е.В., Ходакова Д.В., Гусарева М.А., Зинькович М.С.Romanova M.V., Goncharova A.S., Galina A.V., Kurbanova L.Z., Allilueva E.V., Khodakova D.V., Gusareva M.A., Zinkovich M.S.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://ymj.elpub.ru/jour/article/view/106

Проведена оценка эффективности 3 протоколов криосохранения опухолевой ткани, полученной от пациентов со злокачественными образованиями желудочно-кишечного тракта: пищевода, желудка, толстого кишечника. Эксперимент выполняли на 90 мышах линии Balb/c Nude. Через 90 сут от момента заморозки опухолевых узлов образцы размораживали и имплантировали животным, отмечали количество прижившихся имплантатов и регистрировали начало роста опухолевых узлов у животных. Для криосохранения ксенографтов рака пищевода и толстой кишки человека возможно использование протестированных нами протоколов 2 и 3, где ключевой особенностью является медленное замораживание образцов. Для опухолевого материала желудка необходимо разрабатывать иные способы консервации ввиду низкой эффективности рассмотренных в работе способов.

Background. Modern research requires access to tumor models for various types of studies on a single patient xenograft. Biobanks store tissue fragments and cell cultures for various studies, and it is necessary to form protocols for cryopreservation of various tumor fragments and create collections of biomaterial. Material and methods. The study was performed on tumor material from patients with malignant gastrointestinal tumors (esophagus, stomach, and colon). An experiment included 90 Balb/c Nude mice. The third generation of a PDX model was used for cryopreservation. The effectiveness of 3 protocols for cryopreservation of tumor tissue was evaluated using RPMI nutrient medium, fetal bovine serum (FBS), dimethyl sulfoxide (DMSO) and Mr. Frosty containers. 90 days after the freezing of the tumor nodes, the samples were thawed and implanted to animals; engraftment was noted, and the onset of tumor nodes in animals was recorded. At the end of the experiment, the data were analyzed statistically. Results. Protocol 1 was the least suitable for preserving fragments of esophageal, colon, and gastric tumors. Protocols 2 and 3 showed higher engraftment rates. The lowest engraftment rate was registered for reanimated gastric cancer PDXs. Conclusions. Protocols 2 and 3 with slow freezing of samples should be used for cryopreservation of human esophageal and colon cancer xenografts. Gastric cancer PDXs require other cryopreservation methods due to the low efficiency of the existing ones.

криоконсервацияPDXрак пищеводарак желудкарак толстой кишкиin vivocryopreservationPDXesophageal cancerstomach cancercolon cancerin vivoReferencesИспользование электронного архива результатов прижизненных патологоанатомических исследований, как инструмент внутреннего контроля качества кодирования по системе МКБ-О-3 (ICD-O), на примере анализа злокачественных новообразований желудка / О.И. Кит [и др.] // Южно-Российский онкологический журнал. 2021. Т.2, №1. С.26–34.The use of the electronic archive of results of intravital pathoanatomical studies as a tool for internal quality control of coding according to the ICD-O-3 system (ICD-O), on the example of the analysis of malignant neoplasms of the stomach / O.I. Kit [et al.] // South Russian journal of oncology. 2021. Vol. 2, No. 1. P.26–34. DOI: 10.37748/2686-9039-2021-2-1-3Faltus M., Bilavcik A., Zamecnik J. Vitrification ability of combined and single cryoprotective agents. Plants (Basel). 2021; 6;10(11):2392. DOI: 10.3390/plants10112392Faltus M., Bilavcik A., Zamecnik J. Vitrification ability of combined and single cryoprotective agents. Plants (Basel). 2021; 6;10(11):2392. DOI: 10.3390/plants10112392Goncharova A.S., Egorov G.Y., Kit S.O., et al. Colon cancer modeling by orthotopic xenotransplantation. MPSE. 2021;3:9–9.Goncharova A.S., Egorov G.Y., Kit S.O., et al. Colon cancer modeling by orthotopic xenotransplantation. MPSE. 2021;3:9–9.Intan P.R., Khariri K. The use of laboratory animals in supporting the development of the medical world. SINASIS. 2020;1(1).Intan P.R., Khariri K. The use of laboratory animals in supporting the development of the medical world. SINASIS. 2020;1(1).Lee S., Ryu K.J., Kim B., et al. Comparison between slow freezing and vitrification for human ovarian tissue cryopreservation and xenotransplantation. Int J Mol Sci. 2019 8;20(13):E3346. DOI: 10.3390/ijms20133346Lee S., Ryu K.J., Kim B., et al. Comparison between slow freezing and vitrification for human ovarian tissue cryopreservation and xenotransplantation. Int J Mol Sci. 2019 8;20(13):E3346. DOI: 10.3390/ijms20133346Munroe S., Martens D.E., Sipkema D., et al. Comparison of cryopreservation techniques for cells of the marine sponge dysidea etheria. Cryo Letters. 2018;39(4):269–78.Munroe S., Martens D.E., Sipkema D., et al. Comparison of cryopreservation techniques for cells of the marine sponge dysidea etheria. Cryo Letters. 2018;39(4):269–78.Porter L.H., Lawrence M.G., Wang H., et al. Prostate. 2019;79(11):1326–37. DOI: 10.1002/pros.23839Porter L.H., Lawrence M.G., Wang H., et al. Prostate. 2019;79(11):1326–37. DOI: 10.1002/pros.23839Whaley D., Damyar K., Witek R.P., et.al. Cryopreservation: an overview of principles and cell-specific considerations. Cell Transplant. 2021;24;30:0963689721999617. DOI: 10.1177/0963689721999617Whaley D., Damyar K., Witek R.P., et.al. Cryopreservation: an overview of principles and cell-specific considerations. Cell Transplant. 2021;24;30:0963689721999617. DOI: 10.1177/0963689721999617Yan H.H.N., Siu H.C., Law S., et al. A comprehensive human gastric cancer organoid biobank captures tumor subtype heterogeneity and enables therapeutic screening. Cell Stem Cell. 2018;6;23(6):882-897.e11. DOI: 10.1016/j.stem.2018.09.016Yan H.H.N., Siu H.C., Law S., et al. A comprehensive human gastric cancer organoid biobank captures tumor subtype heterogeneity and enables therapeutic screening. Cell Stem Cell. 2018;6;23(6):882-897.e11. DOI: 10.1016/j.stem.2018.09.016Yang J., Gao L., Liu M., et al. Advanced biotechnology for cell cryopreservation. Trans Tianjin Univ. 2020 Dec 1;26(6):409–23.Yang J., Gao L., Liu M., et al. Advanced biotechnology for cell cryopreservation. Trans Tianjin Univ. 2020 Dec 1;26(6):409–23.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.